PI染色實驗代測

PI染色簡介：

碘化丙啶( propidium iodide,PI )檢測早期死亡細胞膜通透性狀態(tài)的不同是區(qū)分細胞凋亡和壞死的一一個重要指標,凋亡細胞在進入最終溶解階段前,細胞膜通透性無明顯改變,相對分子質量大的與DNA結合的熒光染料(如PI )不能進入凋亡細胞內,而相對分子質量小的熒光染料(如Hoechest 3342或33258等)仍能被細胞攝取。應用流式細胞儀或熒光顯微鏡可區(qū)分和壞死細胞,細胞內DNA出現Hoechest 3342 標記而不出現PI標記的為凋亡細胞。

PI染色原理：

主要是根據細胞凋亡時在細胞、亞細胞和分子水平上所發(fā)生的特征性改變。這些改變包括細胞核的改變、細胞器的改變、細胞膜成分的改變和細胞形態(tài)的改變等，其中細胞核的改變具有特征性。

PI實驗說明：

1、PI染色拍照使用的是熒光拍照。

實驗步驟（僅供參考）：

1、收集細胞{數目約（1~ 5）×106個/mL}，500 ~ 1000 r/min離心5min，棄去培養(yǎng)液。

2、3ml　PBS洗滌1次。

3、離心去PBS，加入冰預冷的70%的乙醇固定，4℃，1—2小時。

4、離心棄去固定液，3mlPBS重懸5min。

5、400目的篩網過濾1次，500—1000r/min離心5min，棄去PBS

6、用1ml　PI染液染色，4℃避光30min。

7、流式細胞儀檢測：PI用氬離子激發(fā)熒光，激光光波波長為488nm，發(fā)射光波波長大于630nm，產生紅色熒光分析PI熒光強度的直方圖也可分析前散射光對側散射光的散點圖。

8、結果判斷：在前散射光對側散射光的散點圖或地形圖上，凋亡細胞與正常細胞相比，前散射光降低，而側散射光可高可低，與細胞的類型有關；在分析PI熒光的直方圖時，先用門技術排除成雙或聚集的細胞以及發(fā)微弱熒光的細胞碎片，在PI熒光的直方圖上，凋亡細胞在G1/G0期前出現一亞二倍體峰。如以G1/G0期所在位置的熒光強度為1.0，則一個典型的凋亡細胞樣本其亞二倍體峰的熒光強度為0.45，可用雞和鮭魚的紅細胞的PI熒光強度做參照標準，兩者分別為0.35和0.7，可以確保在兩者之間的不是細胞碎片而是完整的細胞。

PI染色實驗代測