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信帆生物分享:WB實(shí)驗(yàn)常見的問題指南

更新時(shí)間:2016-03-17      瀏覽次數(shù):1508

信帆生物分享:WB實(shí)驗(yàn)常見的問題指南

1. 參考書推薦

A. 對(duì)初學(xué)者看什么資料比較好?解答:《抗體技術(shù)實(shí)驗(yàn)指南》和Antibodies(a laboratory manual, wrote by Ed Harlow ,david lane)兩本書不錯(cuò)。

2. 針對(duì)樣品的常見問題

B. 做線粒體膜UCP2蛋白的Western Blot (以下簡寫成Western Blot),提取線粒體后凍存(未加蛋白酶抑制劑),用的博士德的一抗,開始還有點(diǎn)痕跡,現(xiàn)在越來越差,上樣量已加到120μg,換了個(gè)santa cloz的一抗仍不行。是什么原因?蛋白酶抑制劑單加PMSF行嗎?

解答:懷疑是樣品問題,可能是:1,樣品不能反復(fù)凍融;2,樣品未加蛋白酶抑制劑。同時(shí),建議檢查Western Blot過程, 提高一抗?jié)舛?。?duì)于加蛋白酶抑制劑來說,一般加PMSF就可以了,能多加幾中種蛋白酶抑制劑。

C. 同一蛋白樣品能同時(shí)進(jìn)行兩種因子的Western Blot檢測嗎?

解答:當(dāng)然可以,有的甚至可以同時(shí)測幾十種樣品。

D. 如果目標(biāo)蛋白是膜蛋白或是胞漿蛋白,操作需要注意什么?

解答:如果是膜蛋白和胞漿蛋白,所用的去垢劑就要溫和得多,這時(shí)加上NaF去抑制磷酸化酶的活性。

E 我的樣品的蛋白含量很低,每微升不到1微克,但是在轉(zhuǎn)膜時(shí)經(jīng)常會(huì)發(fā)現(xiàn)只有一部分蛋白轉(zhuǎn)到了膜上,就是在轉(zhuǎn)膜后染膠發(fā)現(xiàn)有的孔所有的蛋白條帶都在,只是顏色變淡了,有什么辦法可以解決?

解答:你可以加大上樣量,沒有問題,還有轉(zhuǎn)移時(shí)你可以用減少電流延長時(shí)間,多加5-10%甲醇。

F. 想分離的蛋白是分子量260kd的,SDS-PAGE電泳的分離膠濃度多大合適?積層膠的濃度又該用多少?這么大分子量的蛋白容易作Western Blot嗎?

解答:260kd的蛋白不好做, 分離膠用6%, Stacking Gel 3.5%。

G. 如果上樣量超載,要用什么方法來增加上樣量?如果需要加大上樣量使原來弱的條帶能看清楚。

解答:可以濃縮樣品,也可以根據(jù)你的目標(biāo)分子量透析掉一部分小分子蛋白。一般地,超載30%是不會(huì)有問題的。如果已經(jīng)超了不少了,而且小分子量的也要,可以考慮加大膠的厚度,可以試試1.5mm的 comb。

H. 蛋白變性后可以存放多久?

解答:-80℃,一兩年沒有問題。zui關(guān)鍵兩條:不要被蛋白酶水解掉;不要被細(xì)菌消化掉(也是被酶水解了)。

I. 我所測定的蛋白分子量是105KD,按理說分離膠應(yīng)當(dāng)采用7.5%,但我所查資料卻要求分離膠和濃縮膠均采用11%的配方,不知為何?

解答:上述您提到的兩種凝膠均可以使用,因?yàn)?05KD的蛋白在上述兩種膠的線性分辨范圍內(nèi),但需注意條帶位置。

J. 接下來我準(zhǔn)備采用DAB顯色技術(shù),二抗是生物素化的多克隆抗體,三抗是親和素生物素體系,不知采用這樣的方案后,封閉液是否要作調(diào)整,能否再用5%的脫脂奶粉呢?好像有資料說脫脂奶粉會(huì)影響親和素生物素的生成,是嗎?

解答:不能使用脫脂奶粉,因?yàn)槊撝谭壑泻锼?,用BSA代替應(yīng)該好一點(diǎn).

K. 還有一問題,一般一次上樣的蛋白總量是多少,跟目的蛋白的表達(dá)量有關(guān)系嗎?

解答:Western Blot一般上樣30-100微克不等,結(jié)果跟目的蛋白的豐度、上樣量、一二抗的量和撫育時(shí)間都有關(guān)系,也與顯色時(shí)間長短有關(guān)。開始摸條件時(shí),為了拿到陽性結(jié)果,各個(gè)步驟都可以量多一點(diǎn)時(shí)間長一點(diǎn),當(dāng)然背景也就出來了。要拿到好的結(jié)果,如果抗體好的話比較容易,抗體不好的話就需要反復(fù)地試了,當(dāng)然有的不適合Western Blot的怎樣做也不行。所以拿到好的結(jié)果不容易。

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